鼠傷寒沙門氏菌可經三種途徑穿越腸上皮屏障，進入腸系膜淋巴結，通過血液循環擴散至脾、肝、骨髓，在網狀內皮系統的巨噬細胞以及樹突狀細胞中存活，或誘導巨噬細胞凋亡或壞死,或通過刺激巨噬細胞釋放活性氧(reactive oxygen species)與活性氮中間體(reactive nitrogen intermediates)而被巨噬細胞殺死。細菌感染后，采集血漿，PCR檢測細菌核酸，證明動物感染成功。

本實驗采用昆明種6-8周齡的健康成年小鼠，體重均在33±2g，SPF級。飼料墊料均為高壓滅菌產品，購自北京斯貝福生物科技股份有限公司，動物用水為實驗室制UP水經過除菌處理。飼養及實驗操作均于具有檢驗合格資質的SPF級屏障動物室內進行，并且實驗動物以完整的包裝直接進入屏障實驗室，觀察室適應7天后無異常情況，方可進行實驗。所有實驗中小鼠均引頸處死，盡量減少動物手術創傷程度及失血量。實驗過程中動物操作均符合動物倫理學規范，對環境和生態影響等符合國家相關法律規定。

鼠傷寒沙門氏菌進入人體腸道后，能夠入侵并存活于小腸上皮細胞，這一過程通常會造成人體腸道的炎癥。此后，鼠傷寒沙門氏菌能通過刷狀緣上皮細胞，被轉移到淋巴組織中，從而擴散到其它組織。在這個過程中，鼠傷寒沙門氏菌在淋巴細胞，特別是巨噬細胞中存活和繁殖，并逃避人體免疫系統捕殺的能力，是它能造成系統性感染的關鍵原因。小鼠狀態不佳，毛色發暗，行動緩慢，自發進食進水減少，糞便為軟便，排便量減少，感染性小腸炎。

單次灌胃108 CFU沙門氏菌感染小鼠。

1. 研究目的及意義

本實驗動物造模方法采用噁唑酮（oxazolone, OXZ）、2,4,6-三硝基苯磺酸（2,4,6-trinitrobenzene sulfonic acid, TNBS）序貫給藥灌腸，誘導制備小鼠遷延性潰瘍性結腸炎模型，區別于單用噁唑酮或2,4,6-三硝基苯磺酸等化學藥品造成的急性模型，癥狀和病理變化僅維持3-5天，而本方法可維持1-2個月，大大的延長了模型的持續時間，同時也提高了造模的穩定性和所模擬疾病特征性病變的持久性，更符合臨床潰瘍性結腸炎慢性遷延、反復發作的特征，對開展潰瘍性結腸炎病因、病機和治療藥物的相關動物實驗研究具有重要意義。

2. 潰瘍性結腸炎動物模型的國內外研究進展

潰瘍性結腸炎（ulcerative colitis, UC）又稱慢性非特異潰瘍性結腸炎，與克羅恩病同屬于炎癥性腸病（inflammatory bowel disease, IBD）[1-2]，其病因及發病機制至今尚未明確，目前國內外研究主要集中于免疫、遺傳、環境及感染等因素，患者臨床以粘液、膿血便等消化系統的癥狀為主，病情反復發作，遷延不愈，嚴重影響著患者的生活質量，甚至可能導致結腸癌[3]。UC的顯微鏡下病理特征主要為：隱窩結構異常，上皮細胞異常以及炎癥浸潤。黏膜炎癥彌漫性分布，發病時主要臨床表現為腹痛、腹瀉、黏液膿血便、里急后重，并出現血沉、中性粒細胞及嗜酸性粒細胞的增多[4]。人類潰瘍形成是個緩慢的過程，由于其難愈性、易復發性的特點而成為現代難治性疾病之一。目前關于該疾病的實驗室研究模型尚不成熟，且多為急性損傷和病理模擬，缺乏良好的慢性長期的動物模型，無法準確的反映人類臨床UC慢性遷延、反復發作的特點[5]。建立UC動物模型實驗動物的選擇很廣泛，大鼠、小鼠、兔等多種實驗動物都可，但方法各不相同。目前存在的造模方法有如下幾種：

2.1 化學法

2.1.1 乙酸刺激

楊永剛[6]等人采用乙酸灌腸成功建立潰瘍性結腸炎模型，張忠[7]用經肛門注入0.5 g/L肥皂水0.15 mL, 約30 min后用2g/L戊巴比妥鈉經腹腔麻醉，插入直徑3 mm的聚乙烯纖維導管至小鼠直腸內深度約為1~2 cm，注入8%乙酸溶液0.15 mL的方法，結果乙酸組結腸黏膜上皮細胞萎縮、壞死、脫落，成腸壁變薄，皺襞消失，黏膜下淋巴細胞增生并有淋巴濾泡形成。張曉峰[8]研究發現乙酸誘導UC動物模型的作用機理與乙酸直接刺激使血管通透性增加，激肽激活，溶解纖維蛋白活性增加以及凝血機制障礙有關。乙酸誘導UC模型制作方法簡單，成本低，短期內可使小鼠出現UC明顯的癥狀及典型病理變化，是目前實驗性UC模型中應用最廣泛的模型之一，適合于臨床研究UC的發病機制以及新藥的研制開發。但由于乙酸直接刺激造成結腸黏膜和血管的損傷，與臨床致病因素有較大差異，且最初黏膜損傷的非特異性炎癥呈現急性過程，不能表現人類UC所具有的慢性，復發的特點[9]。

2.1.2 DSS法

葡聚糖硫酸鈉 (dextran sulphate sodium,DSS) 是一種肝素樣硫酸多糖體，1958 年Ohkusa[10]最早利用倉鼠建立，閆曙光[11]采用2%葡聚糖硫酸鈉口服2周建立潰瘍性結腸炎小鼠模型，Trivedi [12]通過給Swiss小鼠連續7d自由飲用3.0%DSS水溶液，之后連續14d給予普通飲水，最后再連續7d給予3.0%DSS水溶液建立DSS的慢性UC模型。但是DSS誘導的潰瘍模型個體差異比較明顯，且為短期急性模型，不適宜研究慢性UC引發的結腸癌相關問題。

2.2 復合法

2.2.1 惡唑酮模型(oxazolone,OXZ)+乙醇

惡唑酮是一種半抗原物質[13]，其誘導UC模型先致敏然后進行灌腸給藥，用惡唑酮溶液對小鼠灌腸,小鼠5d后即可出現腸道炎癥[14]，結腸肉眼可見黏膜充血水腫, 糜爛潰瘍, 鏡下見結腸黏膜潰瘍。7d左右病情好轉，10d左右基本痊愈。利用惡唑酮建立潰瘍性結腸炎模型，速度較快，重復性好且制作簡單，但是疾病維持時間相對較短，小鼠模型有自愈傾向，缺少慢性過程，對于慢性復發性潰瘍性結腸炎的模擬度不高。

2.2.2 三硝基苯磺酸(2,4,6-trinitrobenzenesulfonic acid,TNBS)+乙醇

采用異戊巴比妥麻醉，一定量TNBS緩慢灌腸可以誘導急性腸炎Wistar大鼠模型；15d以后再次給予定量TNBS灌腸可以造成復發性結腸炎，可以造成復發性結腸炎[15-16]，三硝基苯磺酸與乙醇灌腸一次致炎是目前最為常用的潰瘍性結腸炎模型建立方法，具有以上其他建模方法所沒有的優點。

2.3 免疫復合法

2.3.1 免疫復合物+TNBS+乙醇

譚琰等[17]實驗證實，與TNBS+乙醇誘導的結腸炎動物模型相比，增加免疫復合物進行復合誘導的方式更符合T/B淋巴細胞混合作用的要求，而且炎癥持續的時間延長了3~4個星期。崔國寧[18]研究免疫復合法建立的大鼠UC模型表現穩定，重復性好，病變持久，發病機制與人類UC相似，是較為理想的模型?？狄吮萚19]研究示免疫復合建立的模型成功率高，重復性好，與人類的UC相似，是較為理想的模型。具體方法：取20只SD大鼠，隨機分為模型組和空白組，每組各10只，模型組給予抗原乳化液于大鼠的背部、頸部皮下，第23天灌腸TNBS/50%乙醇，空白組以生理鹽水代替，比較各組大鼠的大便性狀、體重、便血等，并進行組織學檢查。由此可以看出，本法建立大鼠 UC 模型持續的時間長，潰瘍的形成，與炎性反應都有體現，符合臨床UC的病理要求，但缺點是比較繁瑣。

2.3.2 免疫復合物+乙酸

吳玉泓[20]采用局部乙酸刺激替代TNBS+乙醇灌腸，免疫致敏方法與上述相似，同樣起到了模擬人類UC慢性活動性的特點，也適宜于觀察和評價藥效。

2.4 討論

UC模型最常見的造模方法為化學法、復合法及免疫復合法等，DSS液、TNBS液是化學法中最常用的誘導劑，對造模成功與否所用到的評價指標主要有：疾病活動指數、結腸指數、結腸組織大體評分[21-22]、MPO酶活性檢測[23]，以及形態學觀察和免疫組化學染色細胞觀察[24-25]等。目前對于潰瘍性結腸炎動物模型的誘導大部分屬于急性病發式炎癥，偶有慢性模型誘導的方法，雖然現在建造UC動物模型的方法多種多樣，但是依舊存在著或多或少的缺陷，現階段的UC模型遠不能滿足科學研究的需要，故尋找更好，更方便，更符合人類潰瘍疾病的模型尤為重要。本實驗方法[26-27]將OXZ與TNBS聯合灌腸給藥，按照一定周期誘導小鼠潰瘍性結腸炎模型可維持一個月，使UC模型更接近人類UC發病機制及臨床癥狀，通過控制小鼠的性別、體重、健康飼養狀況、實驗環境與條件等環節，觀察小鼠的行為改變情況、免疫組化、炎癥因子的表達情況，為進一步研究UC的發病機制，防治方法提供符合臨床實際的、標準的、可重復的、可控易行的實驗動物模型，為慢性潰瘍性結腸炎模型的研究提供了可靠的數據支持和實驗依據，是臨床UC治療藥物研究的重要基礎。

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